一、定义与来源
1. 单抗
由单一B细胞克隆产生的抗体，仅识别抗原上的单一表位。
通过杂交瘤技术（如小鼠瘤细胞与B细胞融合）制备，具有高度均一性。
2. 多抗
由多个B细胞克隆产生的抗体混合物，可识别抗原上的多个表位。
通过动物直接免疫后提取血清获得，包含不同亲和力的异质性抗体。
二、制备流程对比
| 特征 | 单抗 | 多抗 |
| 技术复杂度 | 需杂交瘤技术或重组技术，流程复杂 | 免疫动物后直接提取血清，流程简单 |
| 制备周期 | 长（数月） | 短（数周） |
| 成本 | 高昂 | 低廉 |
| 批次一致性 | 高（杂交瘤细胞可无限扩增） | 低（不同动物或批次间差异大） |
三、核心特性对比
单抗的优势与局限
优势：
高特异性：仅结合单一表位，背景信号低，适合定量实验（如流式细胞术）。
均一性：批次间无差异，实验可重复性强。
治疗潜力：用于靶向治疗（如抗癌药物西妥昔单抗）。
局限：
易受表位变化影响：抗原修饰（如糖基化）可能降低结合能力。
跨物种检测受限：仅识别免疫原物种的同源表位。
多抗的优势与局限
优势：
高灵敏度：多表位结合可放大低丰度靶标信号，适合免疫沉淀（IP）和ChIP实验。
适应性广：忍让抗原微小变异（如多态性、变性）。
交叉物种检测：可识别同源蛋白家族的多个物种靶标。
局限：
背景噪声高：非特异性结合较多，需严格验证交叉反应。
批次波动大：不同批次抗体效能可能差异显著。
四、应用场景推荐
1. 优先选择单抗的场景：
需要精准靶向、定量分析或治疗用途（如肿瘤诊断药物）；
实验中要求低背景（如免疫组化、流式细胞术）。
2. 优先选择多抗的场景：
检测天然或变性蛋白，尤其低表达靶标（如Western Blot）；
需覆盖抗原多个区域的实验（如免疫沉淀）。
五、新技术动向
兔单克隆抗体（RabMAb）：结合了单抗的特异性和多抗的高亲和力，适合复杂实验需求。
抗体组合试剂盒：通过混合多个单抗补偿单一表位的局限性，提升检测可靠性。
拓展资料
单抗与多抗各有适用场景，选择需基于实验目标：
单抗：精准性、稳定性优先；
多抗：灵活性、灵敏度优先。
实际应用中常结合两者优势，例如使用单抗定量分析，多抗用于初步筛查。
